在類器官培養過程中，傳代是維持其長期穩定擴增與功能活性的核心環節，而傳代效率的高低直接取決于關鍵步驟的精準把控。以下將從操作手法標準化、類器官自身因素影響、營養體系優化三大維度，詳細拆解類器官傳代的關鍵技術要點，為科研人員提供可落地的實踐指南。

一、操作手法標準化：以 “流程優化 - 參數量化 - 問題解決" 為核心

類器官傳代的操作手法標準化是降低批次差異、提升可重復性的關鍵，需圍繞基質膠冷化、離心條件、消化控制、吹打技巧及分層問題處理五大環節，建立精準的參數體系與動態決策方案。

1. 基質膠冷化：按敏感性匹配溫度 - 時長組合

基質膠的冷化處理需根據類器官對溫度和時長的敏感性差異調整策略，避免因冷化不當影響后續分離效率與細胞活性：

• 溫度敏感型類器官（如部分神經類器官）：推薦 4℃或 0℃預冷 30 分鐘，既能保證基質膠充分軟化，又可避免低溫對細胞的損傷；

• 時長敏感型類器官（如快速增殖的腫瘤類器官）：建議 - 20℃預冷 5 分鐘，縮短操作周期以減少細胞暴露在不適環境中的時間。

實驗表明，0℃預冷可作為 4℃的替代方案，在維持類器官活性的同時，兼容部分對低溫耐受性略高的類型。需特別注意，冷化過程中溫度波動需控制在 ±1℃范圍內，否則會影響基質膠的黏度一致性，進而干擾后續傳代操作。

2. 離心條件：低溫與水平角離心協同提升效果

離心環節的核心目標是實現基質膠與類器官的分層，同時保留細胞活性，關鍵參數與設備選擇如下：

• 核心參數：4℃低溫環境、200-300g 轉速、5 分鐘以內離心時長；

• 離心機選擇：優先使用水平角離心機，其在離心過程中可使樣本液柱與離心管保持平行，讓基質膠與類器官沉淀分層更好，相比固定角離心機，基質膠殘留率可降低 25%，減少后續消化步驟的干擾；

• 類型適配調整：體積較大的類器官（如肝類器官）建議采用 300g 離心 5 分鐘，而鼠源類器官可適當降低至 200g，避免因離心力過大造成機械損傷。

3. 消化控制：室溫鏡檢精準判斷終點

消化是解離類器官結構的關鍵步驟，需通過溫度控制與鏡檢觀察，平衡解離效率與細胞活性：

• 操作環境與時長：全程在室溫超凈臺內進行，消化時長嚴格控制在 2-3 分鐘，避免高溫（如 37℃）導致細胞凋亡率升高（室溫操作可使凋亡率降低 15%），尤其適用于胃腸道、食管等對酶解敏感的類器官；

• 終點判斷標準：通過顯微鏡觀察細胞團直徑，當細胞團達到 50-100μm 時，立即終止消化；

• 酶試劑選擇：需匹配類器官組織類型，例如肝類器官推薦使用 TrypLE™ Express 酶室溫孵育 5-10 分鐘，腸類器官則優先采用 Dispase 或專用消化液 D，防止因過度酶解導致單細胞化，進而降低細胞活性。

4. 吹打技巧：低剪切力實現高效分散

吹打操作的核心是在分散細胞團的同時，減少機械剪切力對細胞的損傷，具體技巧如下：

• 工具選擇：采用 1mL 槍頭或無菌巴氏吸管，避免使用 200μL 槍頭（后者易導致 12% 的細胞碎裂率，而 1mL 槍頭可將碎裂率控制在 5% 以下）；

• 操作手法：以輕柔的圓周運動吹打，吹打次數控制在 30 次以內，全程避免產生氣泡（氣泡會破壞細胞結構）；

• 類型適配調整：囊性類器官建議使用火焰拋光的玻璃巴氏吸管進行機械剪切，密集型類器官可結合 TrypLE Express 酶解后再行吹打，實現 “酶解 + 機械分散" 的協同優化。

5. 問題解決：離心分層的動態決策

離心后常見分層結構為 “緩沖液（上層）- 基質膠（中層）- 類器官沉淀（下層）"，需根據類器官數量動態調整保留策略，避免因處理不當導致細胞損失：

• 數量極少情況（如原代培養或低代數傳代）：保留沉淀層 + 基質膠下 2/3，點膠時新膠量需為殘留膠的 1.5 倍以上，彌補細胞數量不足的問題；

• 數量中等情況：保留沉淀層 + 基質膠全層，同時增加離心轉速至 300g，減少基質膠對后續培養的干擾；

• 分層模糊情況：加入 1mL 預冷緩沖液 G 重懸后，4℃靜置 10 分鐘，利用密度差異實現二次分離，提升分層清晰度。

操作要點速覽

通過上述標準化操作，可使類器官傳代效率提升 30%，批次間變異系數從 22% 降至 8%，為長期培養與藥物篩選提供穩定技術支撐。

二、類器官自身因素影響：從活性、數量、結構把控傳代基礎

類器官自身的生物學特性是決定傳代效率的內在因素，需從活性強度、數量閾值、結構完整性三個維度進行評估與調控，確保傳代過程的可持續性。

1. 活性強度：傳代能力的核心決定因素

不同類型類器官的活性強度差異顯著，直接影響其傳代潛力，可根據傳代難度分為 “易傳代" 與 “難傳代" 兩類：

• 易傳代類器官：以腸癌、子宮內膜癌類器官為代表，其干性維持能力強，連續傳代可達 30 代以上；鼻類器官更具特殊性，可通過自發支持病毒復制實現無需外源性因子的連續傳代；

• 難傳代類器官：包括肝癌、前列腺癌、甲狀腺癌類器官，傳代后常因干性耗竭出現生長停滯甚至凋亡；氣道類器官則需抑制干擾素通路（如使用 CYT387），才能克服免疫反應導致的傳代障礙。

類器官的活性強度與干細胞微環境信號密切相關，例如腦腫瘤干細胞類器官需持續補充 Wnt3a 與 RSPO1 信號分子，若缺失此類干性維持因子，傳代后細胞會迅速分化并喪失增殖活性。

2. 數量閾值：密度依賴性增殖的臨界調控

類器官傳代需滿足 “數量閾值"，即單位培養空間內達到足夠數量的功能性細胞團，以保障旁分泌信號網絡的完整性，避免陷入 “增殖停滯陷阱"：

• 臨界數量標準：24 孔板培養體系中，每孔類器官數量需≥20 個；若低于此閾值（如每孔僅 5-15 個），細胞團分泌的生長因子（如 EGF、FGF）濃度不足，會導致增殖效率大幅下降；

• 密度適配調整：鋪板密度需嚴格控制，過高（>150 個 / 孔）會導致營養競爭加劇，培養基 24 小時內即變黃，代謝廢物積累抑制生長；過低（<20 個 / 孔）則因自分泌因子匱乏，類器官形成效率降低 50% 以上；

• 收獲時機影響：原代類器官的收獲時機直接影響數量達標率，例如中 / 后腸球狀體需在分化第 5-9 天收集，過早（第 5 天）或過晚（>9 天）均會導致細胞團活性下降，間接減少有效傳代數量。

3. 結構完整性：形態學評估與傳代時機判斷

類器官的結構特征是判斷傳代時機的直觀指標，需通過形態學觀察與定量測量聯合判斷，確保傳代時細胞處于最佳生長狀態：

• 理想結構標準：

? 形態：呈規則囊狀（如腸道類器官）、多小葉狀（如肝類器官）或分支管狀（如肺類器官），無中心暗區及壞死灶；

? 直徑：人源類器官通常為 200-500μm，鼠源類器官較?。?/span>100-200μm），超過此范圍易出現中心壞死；

? 生長狀態：每日直徑增幅 5-10%，培養基清澈（未變黃），無局部細胞死亡跡象；

• 傳代時機觸發：當觀察到類器官生長速率減慢（直徑每日增幅 < 5%）、培養基 pH 下降（顏色變黃）或局部出現暗腔時，需立即啟動傳代；

• 碎片大小要求：機械破碎后，需保留 > 100μm 的細胞團碎片，此類碎片的生長率顯著高于單細胞或小碎片（<50μm），后者的類器官形成率僅 10-15%；

• 類型適配調整：不同類器官的結構判斷標準存在差異，例如食管類器官以 “角化珠形成" 為傳代標志（培養 9-14 天），腦類器官則需結合神經球緊湊度及神經元標志物（如 β-III tubulin）表達綜合判斷。

三、營養體系優化：為傳代提供精準 “能量供給"

類器官傳代效率的穩定性高度依賴營養體系的精準調控，需從培養基管理、消化液適配、添加劑優化三個維度構建協同體系，平衡干細胞干性維持與定向分化需求。

1. 培養基管理：儲存策略與配方適配

培養基是類器官傳代的 “能量核心"，其質量控制需關注因子活性維持與個性化配方選擇：

• 儲存策略：

? 培養基（含生長因子）需 - 20℃分裝儲存，有效期可延長至 1 年；

? 4℃短期儲存需嚴格控制在 2 周內，超過 1 個月會導致關鍵因子（如 Wnt3a、R-spondin-1）活性顯著下降，使類器官增殖率從 90% 降至 55%；

? 傳代后干細胞對培養基質量更敏感，需絕對避免使用儲存過久的培養基；

• 配方適配：

? 腸道類器官：人源推薦使用 IntestiCult™ Organoid Growth Medium (human)，鼠源使用對應小鼠版本，此類培養基通過預優化 Wnt/R-spondin 信號軸濃度，可提升傳代后 24 小時貼壁率；

? 乳腺類器官：可測試 1 型和 2 型擴增培養基，或采用自制條件培養基（含 R-spondin-1、Noggin 和 Wnt3a）；

? 腦腫瘤干細胞類器官：需使用 10-DPM 培養基，其中 4-DPM（RG108、A83-01、毛喉素、Bay K8644）為必需小分子，添加 RSPO1 的 5-DPM 配方可實現長期傳代；

• 操作規范：

? 商品化培養基（如 IntestiCult™）37℃水浴解凍后應立即使用，禁止再次冷凍；

? 基質膠使用濃度需 > 70%，操作全程在冰上進行以防提前凝固；

? 換液頻率建議每 3-5 天一次，維持穩定的營養微環境。

2. 消化液適配：酶組合與活性維持

消化液的選擇與管理直接影響類器官解離效率與細胞存活率，需根據組織類型匹配酶組合，并嚴格控制酶活性：

• 酶組合選擇：

? 腸道類器官：推薦使用 TrypLE™ Express，其溫和的蛋白水解活性可減少干細胞損傷；

? 胰腺類器官：需 Dispase 與 DNAse I 聯用，Dispase 分解細胞外基質的同時，DNAse I 可降解游離 DNA，防止細胞團聚；

? 專用消化液優勢：針對性酶組合可使傳代后細胞存活率提升 20%，優于通用消化液；

• 儲存與使用：

? 消化液需 - 20℃分裝保存以維持酶活，有效期可達 1 年；

? 4℃儲存建議 2 周內用完，超過 1 個月會出現酶活性下降，增加過度消化風險；

? 腸道隱窩來源類器官消化后接種時，需添加抗生素（如慶大霉素終濃度 50µg/ml）抑制共生微生物污染，抗生素應在使用前新鮮添加。

3. 添加劑優化：難養類器官的存活調控

針對肝、食管等難養類器官，需通過精準添加信號通路調節劑與生長因子，提升傳代效率與細胞存活：

• 難養類器官適配添加劑：

? 肝類器官：推薦添加 Oncostatin M（OSM，50ng/mL），通過激活 STAT3 通路促進肝細胞成熟與存活；或使用 Y-27632（10μM）抑制 ROCK 激酶活性，減少傳代過程中的凋亡；

? 食管類器官：Y-27632 需在接種第 0 天添加，肝類器官可在整個擴增階段持續使用；

• 擴張培養基因子組合：

? 核心成分：包含 EGF、HGF、FGF-10 等生長因子，TGFβ 抑制劑（A83-01、Noggin）及 PKA 激活劑（forskolin），兼顧增殖與干性維持；

• 階段性調整：

? 傳代起始階段：采用低 FGF2 的起始培養基；

? 第 4 天：換用含 GlutaMaxx 和 FBS 的 IPS 培養基；

? 第 6 天起：切換為 N2 神經誘導培養基，通過階段性營養調控實現定向分化；

• 試劑盒優勢：部分專用試劑盒濟研通過優化因子配比，可提升營養體系穩定性，降低批次間差異。